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生化测定试剂盒


科达宏伟 | K1012 | 线粒体/胞浆制备试剂盒

线粒体/胞浆制备试剂盒  

K1012-50

K1012-100

 

描述:线粒体参与能量代谢过程,参与细胞凋亡与老化等信号转导过程,参与退行性疾病如帕金森氏病,肿瘤等病理过程。线粒体/胞浆分离试剂盒 (Mitochondria Isolation Kit)用于从组织或培养细胞中分离线粒体和胞浆成分。加入缓冲液匀浆破碎组织或培养细胞,经过数次800g12000g离心,在60分钟内即可分离出完整的线粒体和胞浆成分。制备的线粒体具有生物学活性,可进行各种功能研究如酶学测定。更可用于Western Blot2D-胶、线粒体蛋白或DNA提取、蛋白质组学等研究。

组成:Mito-Cyto Isolation Buffer 90 ml for 50 preparation, 180 ml for 100 preparation

储存:短期4 ºC,中长期20 ºC

适用:从组织、培养细胞制备线粒体。

制备程序

1. 组织匀浆:称取50-200 mg新鲜组织如肝脏、脑、心肌等,PBS冲洗,用剪刀剪为0.5cm2碎块放入小容量玻璃匀浆器内。估计组织块总体积。加入1.5 ml冰预冷的Mito-Cyto Buffer。用间隙严密的研杵上下研磨组织20次。

培养细胞匀浆:消化细胞,PBS洗涤,800 × g 5~10 min离心收集细胞。计数。每次提取需要2-5 × 107个细胞。加入1.5 ml冰预冷的Mito-Cyto Buffer重悬细胞,将细胞悬液转移到小容量玻璃匀浆器内。用间隙严密的研杵研磨细胞30-40次。

2. 将组织或细胞匀浆物转移到离心管,800 × g 离心5 min 4 ºC。细胞核、大的膜碎片、未裂解细胞等在管底。

3. 收集上清液并转移到新的离心管。再次800 × g 离心5 min at 4 ºC,弃沉淀。

4. 将上清液转移到新的离心管。12,000 × g 离心10 min 4 ºC。离心后的上清含胞浆成分,可以收集之用于对照实验。线粒体沉淀在管底。

5. 洗涤线粒体:加入0.2 ml Mito-Cyto Buffer,轻弹管底重悬线粒体沉淀;12,000 × g 离心10 min 4 ºC。弃上清,线粒体沉淀在管底。

6. Mito-Cyto Buffer或合适的自备反应缓冲液重悬线粒体沉淀,50 µl/100 mg组织,或100 µl/5 × 107个细胞。测定蛋白浓度。立即使用或70 ºC保存。如进行Western Blot或蛋白质组学研究,可直接用相应的缓冲液重悬线粒体。

注意:

1. 为保证获得完整的线粒体,第一是全程低温操作,将样品管放在冰水浴而不是碎冰块中。第二是快速。微量制备比大规模制备操作更方便和快速,因而更容易获得完整的线粒体。第三,在不破坏亚细胞器的情况下破碎细胞是制备线粒体的最关键环节。用1-3 ml小容量玻璃匀浆器(而不是其它破碎装置)上下研磨培养细胞30-40次。破碎效果与细胞类型有关;与组织块相比,贴壁培养细胞在用玻璃匀浆器匀浆时较难破壁。玻璃匀浆器配套选用间隙严密的研杵,其特征是将研杵插入匀浆器套管后,可提起研杵而套管不会脱落。正确的研磨不是旋转研杵,而是上下缓慢推拉研杵实施机械破碎,且研杵每离开或进入匀浆器长玻璃管口导致压力剧变,使得破碎更为有效在相差显微镜下检查未裂解细胞应在~50%左右即可。过度研磨将破坏线粒体,但研磨不足将降低线粒体的得率。

2. 不同的离心机可据以离心力g计算正确的离心速度,否则将导致不纯。

3. 进行Western Blot2D-胶电泳,可自配1 x SDS-PAGE样品缓冲液裂解线粒体;也可用Mito-Cyto Buffer重悬线粒体,加入自配的2~4 x SDS-PAGE样品缓冲液。

4. 细胞色素C氧化酶可用作线粒体的标志酶。